Sulfanilic acid-modified chitosan mini-spheres and their application for lysozyme purification from egg white

A cation exchange matrix with zwitterionic and multimodal properties was synthesized by a simple reaction sequence coupling sulfanilic acid to a chitosan based support. The novel chromatographic matrix was physico-chemically characterized by ss-NMR and ζ potential, and its chromatographic performance was evaluated for lysozyme purification from diluted egg white. The maximum adsorption capacity, calculated according to Langmuir adsorption isotherm, was 50.07 ± 1.47 mg g-1 while the dissociation constant was 0.074 ± 0.012 mg mL-1 . The process for lysozyme purification from egg white was optimized, with 81.9% yield and a purity degree of 86.5%, according to RP-HPLC analysis. This work shows novel possible applications of chitosan based materials. The simple synthesis reactions combined with the simple mode of use of the chitosan matrix represents a novel method to purify proteins from raw starting materials.Fil: Hirsch, Daniela Belén. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; ArgentinaFil: Baieli, María Fernanda. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; ArgentinaFil: Urtasun, Nicolás. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; ArgentinaFil: Lazaro Martinez, Juan Manuel. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Química y Físico-Química Biológicas ; ArgentinaFil: Glisoni, Romina Julieta. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; ArgentinaFil: Miranda, Maria Victoria. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; ArgentinaFil: Cascone, Osvaldo. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; ArgentinaFil: Wolman, Federico Javier. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; Argentin

Adsorción del macropéptido de la caseína sobre un sustrato cargado: el impacto de la regulación de la carga

El macropéptido de la caseína (constituye entre 20-25 de las proteínas totales en el suero láctico obtenido durante la producción del queso. Contiene un bajo contenido de aminoácidos aromáticos, permitiendo su uso como suplemento alimentario para pacientes de la fenilcetonuria. El GMP puede ser purificado desde el suero láctico mediante el uso de técnicas cromatográficas con sustratos de quitosano. En la superficie del substrato hay una cantidad significativa de grupos cargados, causando la adsorción de la proteína sobre el sustrato, permitiendo su purificación. El GMP no presenta una estructura definida en solución, lo que permite reproducir sus propiedades fisicoquímicas mediante modelos de grano grueso. En este trabajo, se estudia la adsorción del GMP sobre un sustrato cargado. Siguiendo la metodología establecida para estudios similares en polielectrolitos débiles, se utiliza un modelo de grano grueso que incluye las interacciones electrostáticas, volumen excluido y regulación de la carga de los grupos ácido/base débiles del GMP.Fil: Blanco, Pablo M.. Karlova Univerzita; República ChecaFil: Achetoni, Micaela M.. Universidad Tecnologica Nacional. Facultad Regional San Rafael; ArgentinaFil: Baieli, María Fernanda. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; ArgentinaFil: Narambuena, Claudio Fabian. Universidad Tecnologica Nacional. Facultad Regional San Rafael; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; ArgentinaXXII Congreso Argentino de Fisicoquímica y Química InorgánicaLa PlataArgentinaUniversidad Nacional de la Plata. Facultad de IngenieríaAsociación Argentina de Investigación Fisicoquímic

Lactoferrin purification and whey protein isolate recovery from cheese whey using chitosan mini-spheres

Direct protein purification from raw materials by chromatographic media represents an enormous challenge, especially when particulate solids and high charge solute are present. In this sense, protein purification from cheese whey is an excellent opportunity to test new chromatographic matrices that can be applied to direct protein isolation. The present work shows the utility of novel multimodal chitosan-based chromatographic matrices for obtaining lactoferrin (LF) and a whey protein isolate (WPI) directly from cheese whey without any pretreatment. A central composite experimental design was used to optimise an operative sequence. This sequence involved LF capture using sulfanilic acid-modified chitosan mini-spheres followed by the capture of the massive remnant proteins using glycidyl trimethylammonium-modified chitosan mini-spheres. Interestingly, a yield of 68% and 70% purity degree was obtained for LF, and 2.71 mg of WPI mL−1 whey was obtained in the WPI recovery process, revealing a potential industrial use of the developed matrices and processes.Fil: Hirsch, Daniela Belén. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; ArgentinaFil: Martinez Alvarez, Lucas Manuel. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; Argentina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica; Argentina. Ministerio de Relaciones Exteriores, Comercio Interno y Culto. Dirección Nacional del Antártico. Instituto Antártico Argentino; ArgentinaFil: Urtasun, Nicolás. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; Argentina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Departamento de Fisiología, Biología Molecular y Celular; ArgentinaFil: Baieli, María Fernanda. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; ArgentinaFil: Lazaro Martinez, Juan Manuel. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Química y Metabolismo del Fármaco. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Química y Metabolismo del Fármaco; Argentina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Departamento de Química Orgánica; ArgentinaFil: Glisoni, Romina Julieta. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; Argentina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Departamento de Tecnología Farmacéutica; ArgentinaFil: Miranda, María V.. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; ArgentinaFil: Cascone, Osvaldo. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; ArgentinaFil: Wolman, Federico Javier. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; Argentin

Valorization of cheese whey: A challenge for the industrial-scale chromatography

El suero de queso o lactosuero es un subproducto de la fabricación del queso cuya producción mundial anual ronda los 200 millones de toneladas. Su contenido proteico es de 0,6 %, lo que significa 1,2 millones de toneladas de proteínas anuales. Este subproducto industrial contiene proteínas de alto valor comercial todavía no recuperadas eficientemente en nuestro país y en muchos lugares del mundo, siendo su mayor valorización la producción de suero en polvo, lactosa o concentrados proteicos totales. En este artículo se muestra la gran cantidad de proteínas y otras moléculas que pueden ser recuperadas a partir del lactosuero y se describen los métodos utilizados para su purificación. Dentro de las proteínas de alto valor se encuentran la lactoferrina, lactoperoxidasa y la osteopontina, además de las de valor intermedio como la β-lactoglobulina, α-lactalbúmina, caseinomacropéptido e inmunoglobulinas. La purificación de estas proteínas haría rentable la manufactura de un desecho industrial altamente contaminante de costo negativo.The lactoserum or cheese whey is a by-product of the manufacture of cheese whose annual world production around 200 million tons. Its protein content is 0.6%, which means 1.2 million tons of annual protein. This industrial by-product contains proteins of high commercial value not yet recovered efficiently in our country and in many parts of the world, being the production of whey powder, lactose, or total protein concentrates its higher valuation. This article shows the large number of proteins and other molecules that can be recovered from whey and describes the methods for its purification. Within high-value proteins are lactoferrin, lactoperoxidase and osteopontin, in addition to those of intermediate value such as the βlactoglobulin and α-lactalbumin, caseinomacropeptide and immunoglobulins. The purification of these proteins would make cost-effective the manufacture of this industrial waste.Fil: Urtasun, Nicolás. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; ArgentinaFil: Hirsch, Daniela Belén. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Departamento de Microbiología, Inmunología y Biotecnología. Cátedra de Microbiología Industrial y Biotecnología; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; ArgentinaFil: Baieli, María Fernanda. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; ArgentinaFil: Miranda, Maria Victoria. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Departamento de Microbiología, Inmunología y Biotecnología. Cátedra de Microbiología Industrial y Biotecnología; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; ArgentinaFil: Cascone, Osvaldo. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Departamento de Microbiología, Inmunología y Biotecnología. Cátedra de Microbiología Industrial y Biotecnología; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; ArgentinaFil: Wolman, Federico Javier. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; Argentina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Departamento de Microbiología, Inmunología y Biotecnología. Cátedra de Microbiología Industrial y Biotecnología; Argentin

Biomedical applications of hydrogels in the form of nano- and microparticles

Hydrogels are hydrophilic three-dimensional networks of polymeric chains randomly crosslinked by physical or chemical bonds that are able to adsorb large amounts of water. They can be shaped into different physical conformations, such as films, tablets, sponges, fibers or particles in the range of nano and micro scale. This last conformation that includes numerous multi-particulated forms -from particles without any form to spheres- has directly been used in different biomedical applications or as a part of another conformation. Normally, a particulate form of a hydrogel is used when the biomedical application aims at delivering, immobilizing, and/or purifying a biomolecule or when a biological fluid adsorption capacity is necessary. Here, the role of different hydrogels in the form of particles ?with different polymer nature, composition, polymerization, crosslinking and chemical modification- will be discussed. Special attention will be given to the specific polymer characteristics that bring a desired property to the final product in the areas of drug delivery, gene carriers, tissue engineering and scaffolds, biosensors, cosmetics and diagnostic imaging.Fil: Baieli, María Fernanda. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; ArgentinaFil: Urtasun, Nicolás. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Instituto de Química Biológica de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales; Argentin

Isolation of lactoferrin from whey by dye-affinity chromatography with Yellow HE-4R attached to chitosan mini-spheres

Novel integrated chromatographic methods need to be developed for specific, low-cost protein purification from raw materials. Here, a process for bovine lactoferrin (Lf) isolation from sweet whey was developed using cross-linked chitosan mini-spheres with immobilised Yellow HE-4R dye as a low-cost ligand. The maximum adsorption capacity was between 51.14 and 58.28 mg Lf g−1 matrix. In addition, the mini-spheres adsorbed around 95% of the Lf present in the sweet whey and eluted more than 80% of the adsorbed Lf. A yield of 77% with purity greater than 90% was achieved in only one purification step. The purification process was efficient for three consecutive cycles without regeneration steps.Fil: Baieli, María Fernanda. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Departamento de Microbiología, Inmunología y Biotecnología. Cátedra de Microbiología Industrial y Biotecnología; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; ArgentinaFil: Urtasun, Nicolás. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Departamento de Microbiología, Inmunología y Biotecnología. Cátedra de Microbiología Industrial y Biotecnología; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; ArgentinaFil: Miranda, Maria Victoria. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Departamento de Microbiología, Inmunología y Biotecnología. Cátedra de Microbiología Industrial y Biotecnología; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; ArgentinaFil: Cascone, Osvaldo. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Departamento de Microbiología, Inmunología y Biotecnología. Cátedra de Microbiología Industrial y Biotecnología; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; ArgentinaFil: Wolman, Federico Javier. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Departamento de Microbiología, Inmunología y Biotecnología. Cátedra de Microbiología Industrial y Biotecnología; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; Argentin

High-level expression and purification of recombinant wheat germ agglutinin in Rachiplusia nu larvae

Wheat germ agglutinin (WGA) is a homodimeric lectin stabilized by non-covalent interactions. Each monomer of 171 residues, which has a complex structure with 16 disulfide bridges, determines two sites for the specific binding of N-acetyl-d-glucosamine and one for the specific binding of N-acetylneuraminic acid. Because of these folding requirements, the production of high yields of recombinant WGA is still not possible and its extraction from wheat germ is the only source for commercial purposes. This work reports for the first time the expression of WGA isolectin A (WGA A), using a baculovirus expression system in Sf9 cells and Rachiplusia nu larvae. High levels of recombinant WGA A were obtained in both cases, especially in R. nu, where yields reached 346.6 ± 88.5 μg/g of larvae. Also, an integrated purification method was developed based on aqueous two-phase separation coupled to affinity chromatography using chitosan mini-spheres. The recombinant WGA A was able to recognize ovoalbumin sugar moieties, cross-react with anti-WGA serum and agglutinate human red blood cells, and showed the same behavior as that of commercial WGA in SDS-PAGE and RP-HPLC analyses.Fil: Urtasun, Nicolás. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Departamento de Microbiología, Inmunología y Biotecnología. Cátedra de Microbiología Industrial y Biotecnología; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; ArgentinaFil: Baieli, María Fernanda. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; Argentina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Departamento de Microbiología, Inmunología y Biotecnología. Cátedra de Microbiología Industrial y Biotecnología; ArgentinaFil: Cascone, Osvaldo. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; Argentina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Departamento de Microbiología, Inmunología y Biotecnología. Cátedra de Microbiología Industrial y Biotecnología; ArgentinaFil: Wolman, Federico Javier. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; Argentina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Departamento de Microbiología, Inmunología y Biotecnología. Cátedra de Microbiología Industrial y Biotecnología; ArgentinaFil: Miranda, Maria Victoria. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; Argentina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Departamento de Microbiología, Inmunología y Biotecnología. Cátedra de Microbiología Industrial y Biotecnología; Argentin

Bovine lactoferrin purification from whey using Yellow HE-4R as the chromatographic affinity ligand

The worldwide production of whey increases by around 186 million tons each year and it is generally considered as a waste, even when several whey proteins have important economic relevance. For its valorization, inexpensive ligands and integrated chromatography methods need to be developed for specific and low-cost protein purification. Here, we describe a novel affinity process with the dye Yellow HE-4R immobilized on Sepharose for bovine lactoferrin purification. This approach based on a low-cost ligand showed an efficient performance for the recovery and purification of bovine lactoferrin directly from whey, with a yield of 71% and a purification factor of 61.Fil: Baieli, María Fernanda. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Departamento de Microbiología, Inmunología y Biotecnología. Cátedra de Microbiología Industrial y Biotecnología; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay; ArgentinaFil: Urtasun, Nicolás. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Departamento de Microbiología, Inmunología y Biotecnología. Cátedra de Microbiología Industrial y Biotecnología; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay; ArgentinaFil: Miranda, Maria Victoria. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Departamento de Microbiología, Inmunología y Biotecnología. Cátedra de Microbiología Industrial y Biotecnología; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay; ArgentinaFil: Cascone, Osvaldo. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Departamento de Microbiología, Inmunología y Biotecnología. Cátedra de Microbiología Industrial y Biotecnología; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay; ArgentinaFil: Wolman, Federico Javier. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Departamento de Microbiología, Inmunología y Biotecnología. Cátedra de Microbiología Industrial y Biotecnología; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay; Argentin

Single-step purification of equine chorionic gonadotrophin directly from plasma using affinity chromatography

Equine chorionic gonadotrophin (eCG) is a hormone widely used in superovulation protocols because of its follicle-stimulating action, which increases reproductive efficiency in animals of productive interest. It contains 45% carbohydrate, 10% of which is N-acetylneuraminic acid (sialic acid). The eCG purification procedures from equine serum or plasma are mainly based on chromatographic methods. However, before these procedures, it is necessary to follow sample pre-conditioning steps, such as several precipitation stages and/or ultrafiltration/diafiltration processes. In this work, an efficient affinity chromatographic matrix for eCG purification directly from plasma was developed. The matrix consisted of chitosan mini-spheres with immobilized wheat germ agglutinin (WGA). The matrix allowed 98% adsorption of eCG directly from plasma without any pre-treatment with an overall yield of around 60%. The matrix chosen was able to maintain the efficient performance of the purification process for three consecutive cycles. Also, the process was scaled-up 500 times in volume and tested over seven consecutive cycles maintaining its chromatographic performance. The results presented here suggest the potential application of this matrix to one-step purification of eCG from plasma.Fil: Baieli, María Fernanda. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; ArgentinaFil: Urtasun, Nicolás. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; ArgentinaFil: Hirsch, Daniela Belén. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; ArgentinaFil: Miranda, María Victoria. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; ArgentinaFil: Cascone, Osvaldo. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; ArgentinaFil: Wolman, Federico Javier. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; Argentin

Lactoperoxidase purification from whey by using dye affinity chromatography

Bovine lactoperoxidase is a glycoprotein present in milk, whey and colostrum, which might be used in dairy, cosmetic, pharmaceutical, veterinary and agricultural applications due to its broad antimicrobial activity. Here, we describe a novel process for bovine lactoperoxidase purification by using dye affinity chromatography. Eighteen triazine dyes were immobilized on Sepharose 6B and screened for their performance as possible ligands. Five of the dye-Sepharose matrices showed over 90% adsorption of bovine lactoperoxidase directly from whey without any pretreatment using the batch mode, and were thus selected for further adsorption and elution studies. The highest elution degree was obtained using 20 mM acetate buffer, pH 5.0, 2 M NaCl, as the eluent for all the matrices. Whey processed using the Reactive Red 4-Sepharose matrix in batch mode showed the highest bovine lactoperoxidase purification yield (86.5 ± 3.8%), purification factor (46.1 ± 1.1), and a relative purity higher than 80% according to SDS-PAGE gel densitometry. Whey processed using packed-bed column mode showed lower yields and additional whey pretreatments were needed for dynamic processing. The interaction between bovine lactoperoxidase and Reactive Red 4-Sepharose matrix was characterized using Langmuir isotherm model. The Kd value was 0.21 ± 0.03 mg/mL and the Qmax was 32.21 ± 1.24 mg/g. The results presented here suggest the potential application of the Reactive Red 4-Sepharose matrix to one-step purification of bovine lactoperoxidase from whey.Fil: Urtasun, Nicolás. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; ArgentinaFil: Baieli, María Fernanda. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; ArgentinaFil: Hirsch, Daniela Belén. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; ArgentinaFil: Martínez Ceron, María Camila. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; ArgentinaFil: Cascone, Osvaldo. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; ArgentinaFil: Wolman, Federico Javier. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Houssay. Instituto de Nanobiotecnología. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Farmacia y Bioquímica. Instituto de Nanobiotecnología; Argentin